Колоректальный рак (КРР) – одно из распространенных заболеваний в мире и в России, за последние 20 лет он переместился с шестого места на третье. Каждый год регистрируется около 1 млн случаев – 10,2% общего количества злокачественных образований, смертность от него составляет более 500 тыс. пациентов – от 1,45% всех смертей при онкопатологи: второе место. Однако при выявлении КРР на ранних стадиях заболевания 5-летняя выживаемость составляет 64–67%. Статистические данные и ряд исследований предполагают, что есть риск роста КРР в будущем на 25% независимо от географического расположения и расы. В связи с этим необходимы ранняя диагностика и меры профилактики.
Одним из факторов развития КРР являются эпителиальные образования толстой кишки, которые могут клинически не давать никаких симптомов заболевания и не выявляться при лабораторной диагностике, в том числе при анализе кала на скрытую кровь (рис. 1–3 – динамика развития КРР от слизистой оболочки без патологических образований через тубулярную аденому с низкой степенью дисплазии в аденокарциному). «Золотым стандартом» диагностики эпителиальных образований и соответственно профилактики КРР является колоноскопия – методика визуализации слизистой оболочки толстой кишки. Диагностика и одновременное удаление эпителиальных образований снижают частоту КРР и смертность от него. В результате своевременных скрининговых и диагностических колоноскопий показатель смертности от КРР снижается до 35% [23]. Риск развития рака толстой кишки в возрасте старше 50 лет увеличивается в 10 раз, в связи с этим, согласно рекомендациям ESGE (European Society of Gastrointestinal Endoscopy) [23], AGA (American Gastroenterological Association), JGES (Japan Gastroenterological Endoscopy Society), колоноскопию необходимо начинать выполнять с 45 лет. В настоящее время изучается частота встречаемости КРР в более раннем возрасте, согласно исследованиям, порог первой колоноскопии может быть снижен [18].
Тщательно выполненная колоноскопия позволяет выявить изменения на слизистой оболочке толстой кишки от 1 мм, поэтому осмотр должен быть тотальным с обязательным осмотром терминального отдела тонкой кишки, устья аппендикса с фотофиксацией (при частоте интубации слепой кишки <80% вероятность развития проксимального и интервального КРР повышается) [24], что рекомендовано ESGE [25], ASGE, JGES и мультицентровым исследованием QuaCol (Quality of Colonoscopy). Качество подготовки влияет на проведение колоноскопии и повышает выявление эпителиальных образований, особенно в плоских и плоско-возвышенных в проксимальных отделах толстой кишки.
Извлечение колоноскопа должно составлять не менее 6 мин (целевой показатель более 10 мин). Расчет времени с начала выведения из купола толстой кишки до анального канала и на осмотр слизистой оболочки проводится без учета времени на взятие биопсии, полипэктомии и указывается в протоколе. Увеличение времени извлечения колоноскопа повышает показатели частоты выявления аденом (Adenoma Detection Rate, ADR) и частоты выявления полипов (Polyp Detection Rate, PDR) на 3,6% за каждую минуту [25].
В настоящее время эндоскопическое оборудование экспертного класса позволяет диагностировать эпителиальные образования толстой кишки размером от 1 мм, определять их морфологическую структуру, предполагать гистологический тип, отсутствие или наличие тяжелой дисплазии, прогнозировать ее глубину, диагностировать рак и оценивать степень инвазии [2, 3, 7, 11] благодаря «оптической биопсии», используя белый свет, изображения высокой четкости, узкий спектр света (Narrow-Band Imaging, NBI [8, 10, 26], i-Scan), режим близкого фокуса, хромоскопию уксусной кислотой с концентрацией 1,5%.
Выявленные эпителиальные образования описываются по нескольким классификациям, помогающим более точно характеризовать макротип, структуру поверхности и капиллярный рисунок для определения дальнейшей тактики, выбора способа удаления и сроков наблюдения.
1. Парижская классификация (2002) [37] определяет макротип эпителиального образования; распространенность полиповидных образований (0-Ip и 0-Is) при выполнении колоноскопии до 50%. Частота неполиповидных образований зависит от его макроскопического типа: 0-IIa – 44%, 0-IIb – 1%, 0-IIc – 5%. Необходимо учитывать, что 0-IIс имеет высокий риск подслизистой инвазии (до 27–36%). Для того чтобы отнести полип к тому или иному морфологическому типу, необходимо правильно измерить его высоту, для этого используются биопсийные щипцы, высота которых в закрытом виде составляет 2,5 мм, поэтому, если образование не выше, его относят к неполиповидным. Если неполиповидные образования имеют размер более 10 мм в диаметре, то они являются латерально распространяющимися и их классифицируют следующим образом:
1) гранулярного типа (LST-G) с наименьшим риском подслизистой инвазии:
LST-G-Н (гомогенный тип), 0-IIa;
LST-G-М (нодулярный смешанный тип), 0-IIa, 0-IIa+0-Is;
2) негранулярного типа (LST-NG):
LST-NG-F (плоско-приподнятый тип), 0-IIa;
LST-NG-PD (с псевдодепрессией), 0-IIa+0-IIc (с очень высоким риском подслизистой инвазии).
2. Классификация Kudo (pit pattern, 1994) оценивает эпителиальные ямки [22–24, 26, 27], определяет наличие или отсутствие инвазии и дает прогноз его морфологической структуры; для четкой визуализации краев образования, возвышений и углублений поверхности дополняется хромоскопией (1,5% раствором уксусной кислоты или индигокармином):
I – округлые ямки, соответствует нормальной слизистой;
II – звездчатые ямки, мелкие или крупные, соответствует гиперпластическим полипам, зубчатым образованиям;
IIIS – мелкие округлые или овальные ямки, соответствует аденоме;
IIIL – удлиненные тубулярные ямки, соответствует аденоме;
IV – извилистые ямки, соответствует образованиям с дисплазией высокой степени, до 28–30% рак;
V1 – нерегулярные ямки, соответствует карциноме;
VN – бесструктурные ямки, соответствует карциноме с глубокой подслизистой инвазией.
3. Классификация Sano [31, 32] позволяет определить сосудистый рисунок эпителиального образования:
I – сосуды слабо различимы;
II – визуализируются четкие сосуды с некоторым утолщением вокруг ямок;
IIIA – нерегулярные, плотно расположенные сосуды;
IIIB – разрушенные, обрывками или полностью отсутствуют сосуды.
Последние две группы могут соответствовать тяжелой дисплазии и раку с инвазией. Необходима оценка ямочного рисунка. При оценке одного из показателей (рисунок поверхности или сосудистый) не всегда достаточно информации, для отражения обоих показателей используют классификации NICЕ [Narrow-Band Imaging (NBI) International Colorectal Endoscopic – Международная колоректальная эндоскопическая классификация осмотра в узком спектре света NBI] или JNET (Japan NBI Expert Team – японская группа экспертов осмотра в узком спектре света NBI).
4. Классификация NICЕ или JNET (2011) [8, 10, 26] основана на использовании узкоспектрального света (NBI) и отображает одновременно характеристику структуры поверхности и сосудистого рисунка.
Тип 1 – цвет полипа аналогичен окружающей его слизистой или несколько светлее, сосуды не визуализируются либо слабо заметны, на поверхности светлые или темные пятна одинакового размера либо однородное отсутствие рисунка.
Тип 2 – цвет полипа более коричневый по сравнению с окружающей его слизистой, коричневые сосуды располагаются вокруг регулярных ямок (более светлых, чем сосуды), поверхность с овальными, удлиненными, тубулярными светлыми ямками.
Тип 3 – цвет полипа темно-коричневый по сравнению с окружающей его слизистой, иногда с пятнами белесого цвета, сосудистый рисунок разрушен, обрывками, может отсутствовать, поверхностные ямки стертые, могут отсутствовать.
При оценке по данной классификации возможна оценка наличия или отсутствия дисплазии, инвазии. Усовершенствованная NICE классификация – JNET (Japanese NBI Expert Team) также применяется для оценки сосудистого рисунка и рельефа поверхности полипа [8, 10, 26]:

• тип 1 – сосудистый рисунок не визуализируется, ямки регулярные темные или белесые точечные, похож на структуру окружающей неизмененной слизистой, соответствует гиперпластическому полипу или зубчатому образованию;
• тип 2А – регулярно расположенные одинакового диаметра сосуды сетчатого или спирального вида, поверхность с тубулярными, регулярными ямками, могут быть разветвленные, соответствует полипам с низкой степенью дисплазии;
• тип 2В – диаметр сосудов различный, нерегулярный, ямочный рисунок нерегулярный или отсутствует, соответствует неоплазии с высокой степенью дисплазии или раку с подслизистой инвазией;
• тип 3 – очаги без сосудистого рисунка, утолщенные, обрывистые, зоны без ямок, аморфные, соответствуют раку с глубокой подслизистой инвазией.

Вышеуказанные классификации позволяют каждое эпителиальное образование отнести к соответствующей группе, что определяет тактику его ведения (удаление) и сроки наблюдения.

1. Гиперпластические полипы являются наиболее распространенными зубчатыми неоплазиями с преимущественной локализацией в левой половине толстой кишки и в прямой кишке (до 75–90%), с очень низким потенциалом злокачественности. По классификации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ, 2019) гистологически выделяют микровезикулярный тип (Microvesicular Hyperplastic Polyp, MVSPs) – предшественник зубчатых образований и богатый бокаловидными клетками (Goblet Cell Hyperplastic Polyp, GCSPs) – предшественник традиционной зубчатой аденомы.
   Эндоскопическая характеристика: плоское или плоско-возвышенное образование, 0-IIa тип, или на широком основании, 0-Is тип, до 5 мм в диаметре (рис. 4А, Б), бледно-розового цвета, может быть одного цвета с окружающей слизистой или несколько светлее, округлый либо звездчатый ямочный рисунок (Kudo I) – см. рис. 4А, сосудистый рисунок не расширен, регулярный, сетчатого типа вокруг ямок (Sano 1) – рис. 4Г.
2. Зубчатые образования на широком основании встречаются у 1/3 пациентов, преимущественно у женщин, распространенность 2–20%, из них до 75% локализованы в проксимальных отделах толстой кишки, развитие рака происходит по зубчатому пути канцерогенеза, на их долю приходится до 15–30% всех КРР. Классифицируют, согласно ВОЗ (2019), на зубчатые образования с дисплазией и без нее, частота тяжелой дисплазии встречается в 4–37%.
   Эндоскопическая характеристика: плоское или плоско-возвышенное образование 0-IIa типа с нечеткими краями размером более 5 мм с наличием на поверхности «муцинозной шапочки» или ободка мусора (рис. 5А), бледно-розового цвета, может соответствовать окружающей слизистой с зубчатыми краями и мелкозернистой поверхностью (рис. 5Б), в режиме NBI белесого цвета, округлый ямочный рисунок с дилатированными устьями крипт (II-0 по Kimura, ямки шире и более округлые), капиллярный рисунок нерасширенный, регулярный, сетчатого типа, вокруг ямок расширены изолированные сосуды.
   Для диагностики зубчатых образований на широком основании требуются более тщательный осмотр, хорошая подготовка кишки (более 6 баллов), осмотр правых отделов в ретрофлексии.
3. Традиционная зубчатая аденома (TЗA) встречается в 1,2–7%, размер чаще до 10 мм, имеет одновременно низкий и высокий потенциал дисплазии. Выявляется преимущественно в дистальной части толстой и в прямой кишке, другие локализации реже. Полиповидные формы более характерны для дистальной части толстой кишки, а неполиповидные – для проксимальной. В большинстве случаев TЗA имеет ворсинчатое строение, часто с отечными, булавовидно-расширенными на концах ворсинами (bulbous tips), похожа часто на аденому, может встречаться на ножке и стелющаяся.
   Эндоскопическая характеристика: полиповидные на ножке, 0-Iр тип, или на широком основании, 0-Is тип (рис. 6А-В), встречаются и плоско-приподнятые, 0-IIa тип, ярко-красного цвета (коралловидные, в виде шишки или листьев папоротника), извилистый, виллезный ямочный рисунок. Отличаются особыми типами ямочного рисунка: IIIH (fern-like pit pattern) – хребтообразная, зазубренная поверхность, напоминающую лист папоротника; IVH – визуально напоминают шишку (pinecone-like appearance) (см. рис. 6Б, В), сосудистый рисунок темно-коричневого цвета, регулярный, сетчатого типа, вокруг ямок могут быть расширены изолированные сосуды (см. рис. 6Б, В).
4. Аденоматозные полипы распространены по всем отделам толстой кишки, преимущественно – до 80% в левой половине, встречаются до 15% всех полипов. Морфологически различают тубулярную, тубуло-ворсинчатую и ворсинчатую аденомы (зависит от количества ворсинчатого компонента в поле зрения при микроскопии).
   Эндоскопическая характеристика: полиповидные на ножке, 0-Iр тип (рис. 7В), или на широком основании, 0-Is тип (рис. 7Б), ярко-красного цвета с выраженной тубулярной структурой, извилистый, виллезный ямочный рисунок, напоминает вид цветной капусты, сосудистый рисунок темно-коричневый, регулярный, сетчатого типа (рис. 5А-В), вокруг ямок, расширены изолированные сосуды (рис. 7А).
   После определения морфологической принадлежности эпителиального образования, предположения его гистологического типа и исключения признаков дисплазии и рака выбирается способ удаления, согласно рекомендациям ESGE, AGA [15], JGES. При выявлении полипов на широком основании или плоских (тип 0-Is, 0-IIa, 0-IIa+0-IIc) ориентируются на размер образований. При размере до 3 мм выполняется удаление биопсийными щипцами, 3–5 мм холодной петлевой резекцией для удаления единым блоком; полипы 6–9 мм удаляются холодной петлевой резекцией [4, 5]; полипы размером более 10 мм, у которых отсутствует инвазия или признаки дисплазии высокой степени до 19 мм, удаляются холодной или горячей петлевой резекцией, более 20 мм – эндоскопическая резекция слизистой при условии возможности удаления единым блоком или фрагментарно.
   При более крупных образованиях (более 40 мм) показания к эндоскопическому удалению решаются в экспертном центре. При подозрении или наличии поверхностной подслизистой инвазии возможна эндоскопическая резекция слизистой или диссекция в подслизистом слое; при подозрении или наличии глубокой инвазии необходимо отказаться от эндоскопической полипэктомии и направить для хирургического лечения, предварительно проведя эндоскопический татуаж образования.
   Тактика при обнаружении полипов на ножке (0-Ip тип) зависит от длины, толщины ножки, размера головки. Если ножка не больше 10 мм, а размер головки не превышает 20 мм, то рекомендовано выполнить горячую петлевую резекцию. При превышении этих показателей предварительно выполняется эндоскопический лифтинг образования и затем горячая петлевая резекция или эндоскопическая резекция слизистой, также используется предварительное наложение лигатуры на ножку перед выполнением полипэктомии.
   Биопсия образований выполняется для морфологического уточнения тяжести дисплазии или инвазии. В остальных случаях в настоящее время считается, что она вызывает нежелательные эффекты, в дальнейшем при выполнении полипэктомии в зоне биопсии обнаруживаются рубцовые ткани, подслизистый склероз, что мешает полному удалению, предварительному лифтингу и приводит к неполному удалению полипа, интервальному раку и развитию осложнений.
   Эндоскопическую полипэктомию выполняют в амбулаторных и стационарных условиях. Амбулаторно удаляются эпителиальные образования до 10 мм эксцизионной биопсией или холодной петлевой резекцией; при удалении образований до 10 мм эндоскопической резекцией слизистой (Endoscopic Mucosal Resection, EMR) или более 10 мм «горячим» или «холодным» способом необходима госпитализация пациентов в стационар пребывания одного дня или в хирургический стационар для наблюдения в динамике с целью профилактики неблагоприятных событий.
   Полипэктомия является малоинвазивным вмешательством, после которого могут возникнуть неблагоприятные события, связанные с удалением: кровотечение непосредственно после полипэктомии, отсроченные кровотечения, синдром коагуляционного некроза, перфорация. По данным литературы, их частота невелика, она может меняться при удалении больших полипов и расширении методик.
   Необходимо тщательно осматривать постполипэктомический дефект для подтверждения радикальности удаления и профилактики интервального рака [33]. По данным литературы, у пациентов с КРР в 5,8% случаев были выявлены остаточные зубчатые аденомы после полипэктомии и установлено, что неадекватная эндоскопическая полипэктомия повышает риск развития КРР или возникновение рецидива в месте удаления полипа до 25%. Неполное удаление полипов, по данным разных авторов, размером 5–20 мм отмечается в 6,5–22,7%. При удалении зубчатых образований на широком основании единым блоком неполное удаление встречается до 8,4% образований ≥1 cм, а при пофрагментарной резекции – до 20,4%.
   После выполненного удаления эпителиальных образований необходимо соблюдать временные интервалы при проведении последующих колоноскопий (опираться на результат колоноскопии, выявленной патологии, качество подготовки, результат гистологического исследования). Менее 30% пациентов, которым выполнили полипэктомию, получают соответствующее наблюдение, причина неадекватного наблюдения – неадекватные рекомендации.

Пациенты в зависимости от группы риска развития КРР имеют разные сроки наблюдения, согласно рекомендациям ESGE, AGA [14, 15], JGES:

1. Пациенты с высоким уровнем развития КРР (полипы с виллезным компонентом или с дисплазией, или размером более 10 мм, с зубчатыми образованиями более 10 мм или с дисплазией независимо от размера, более 5 полипов) после полного удаления полипов повторная колоноскопия выполняется через 3 года, при неполном удалении – через 3–5 мес. Далее при отсутствии полипов на повторной колоноскопии назначается контроль через 5 лет, при обнаружении и полном удалении на контроле – через 3 года. Если полипы на контрольных вторых колоноскопиях не выявлены, то пациент отпускается на 10 лет. Прекращают наблюдение в возрасте 80 лет или раньше, если ожидаемая продолжительность жизни ограничена сопутствующими заболеваниями.
2. Пациенты с низким риском развития КРР (до 4 тубулярных аденом размером менее 10 мм без дисплазии или с дисплазией низкой степени, зубчатые образования менее 10 мм без дисплазии) или при отсутствии полипов при выполнении колоноскопии выполняют колоноскопию через 10 лет.
3. Пациенты, у которых была выполнена пофрагментная резекция эпителиальных образований более 10 мм, независимо от морфологической структуры и гистологического типа, а также отсутствия дисплазии высокой степени и признаков рака проходят эндоскопический контроль через 6 мес.
4. При подготовке толстой кишки менее 6 баллов по шкале Бостон при первичной колоноскопии и выявлении полипов – эндоскопический контроль через 3 мес.
5. Если в интервалах между эндоскопическими наблюдениями при выполнении анализа кала на скрытую кровь (Faecal Occult Blood Tests – FOBT) выявлен положительный результат, то рекомендовано принять решение о проведении колоноскопии, основываясь на клинических данных пациента.

Выводы

1. Колоноскопия – «золотой стандарт» в диагностике предраковых состояний толстой кишки и рака. Скрининговая колоноскопия позволяет предотвратить КРР или выявить его на ранней стадии, диагностировать эпителиальные образования и одномоментно выполнить полипэктомию, особенно у пациентов старше 50 лет и с отягощенным анамнезом по КРР.
2. Хорошая подготовка по шкале Бостон (более 6 баллов) и соблюдение рекомендаций по качеству выполнения колоноскопии (достижение купола слепой кишки и осмотр терминального отдела тонкой кишки) повышают эффективность колоноскопии и увеличивают процент выявления полипов.
3. При диагностике использование современных классификаций, «оптической биопсии» позволяет определить морфологический тип эпителиального образования и определить дальнейшую тактику.
4. Выявленные эпителиальные образования рекомендуется, согласно ESGE, AGA и JGES, удалять непосредственно при колоноскопии, биопсия берется в случаях подозрения на тяжелую дисплазию или инвазию.
5. Выбор способа удаления определяется морфологической структурой, размером, локализацией эпителиального образования.
6. Полипэктомия должна быть радикальной и безопасной, следует профилактировать развитие нежелательных явлений после удаления.
7. Необходимо соблюдение сроков наблюдения при проведении последующих колоноскопий после полипэктомии.

СВЕДЕНИЯ ОБ АВТОРАХ

Николайчук Татьяна Викторовна (Tatiana v. Nikolaichuk) – член исполкома Московского эндоскопического общества, врач-эндоскопист отделения эндоскопии КДЦ «МЕДСИ» на Красной Пресне, АО ГК «МЕДСИ», Москва, Российская Федерация
E-mail: tanya.nikolaychyk@mail.ru
https://orcid.org/0009-0008-4899-7221

Щербаков Петр Леонидович (Petr L. Scherbakov) – доктор медицинских наук, профессор, профессор кафедры гастроэнтерологии ГБУЗ МО МОНИКИ им. М. Ф. Владимирского; член правления Российского эндоскопического общества, Москва, Российская Федерация
E-mail: shcherbakov.pl@medsigroup.ru

Агейкина Наталья Владимировна (Natalia v. Ageykina) – кандидат медицинских наук, председатель Московского эндоскопического общества, заведующий эндоскопическим отделением КДЦ «МЕДСИ» на Красной Пресне, АО ГК «МЕДСИ», Москва, Российская Федерация
E-mail: ageykina.natalia@yandex.ru
https://orcid.org/0000-0001-8726-0929

Анохина Светлана Георгиевна (Svetlana G. Anohina) – кандидат медицинских наук, врач-эндоскопист эндоскопического отделения КДЦ «МЕДСИ» на Красной Пресне, АО ГК «МЕДСИ», Москва, Российская Федерация
E-mail: Sv_anohina@mail.ru

Валиулин Ильдар Рауфович (Ildar R. Valiulin) – врач-эндоскопист эндоскопического отделения КДЦ «МЕДСИ» на Красной Пресне, АО ГК «МЕДСИ», Москва, Российская Федерация
E-mail: ildartatval@mail.ru
https://orcid.org/0009-0005-6110-8941

Василенко Юрий Васильевич (Yuriy v. Vasilenko) – доктор медицинских наук, врач-эндоскопист эндоскопического отделения КДЦ «МЕДСИ» на Красной Пресне, АО ГК «МЕДСИ», Москва, Российская Федерация
E-mail: vasilenkoyuriy@gmail.ru

Гусева Евгения Владимировна (Evgeniya v. Guseva) – врач-эндоскопист эндоскопического отделения КДЦ «МЕДСИ» на Красной Пресне, АО ГК «МЕДСИ», Москва, Российская Федерация
E-mail: Guseva.evn@medsigroup.ru

Иванов Илья Игоревич (Iliya I. Ivanov) – врач-эндоскопист эндоскопического отделения КДЦ «МЕДСИ» на Красной Пресне, АО ГК «МЕДСИ», Москва, Российская Федерация
E-mail: Ivanov. ILI@medsigroup.ru

Старченков Денис Дмитриевич (Denis D. Starchenkov) – врач-эндоскопист эндоскопического отделения КДЦ «МЕДСИ» на Красной Пресне, АО ГК «МЕДСИ», Москва, Российская Федерация
E-mail: Starchenkov.dd@medsigroup.ru

Литература

1. Агапов М.Ю., Сакаева М.Н., Рагулина Л. В. Зубчатые аденомы толстой кишки: клинико-морфологическая характеристика и клиническое значение // Врач. 2013. № 11. С. 55–58.
2. Агапов М.Ю., Стегний К.В., Рыжков Е.Ф., Рагулина Л.В., Двойникова Е. Р. Сравнительная оценка различных способов определения глубины опухолевой инвазии при подозрении на ранний колоректальный рак // Эндоскопическая хирургия. 2013. Т. 19, № 4. C. 24–26.
3. Агапов М. Ю. Эндоскопическая хирургическая тактика при полипах и раннем раке толстой кишки: автореф. дис. … канд. мед. наук. Москва, 2000. 25 с.
4. Агапов М.Ю., Крекотень А.А., Рыжков Е.Ф., Барсуков А. С. Факторы риска осложнений эндоскопической резекции слизистой и диссекции в подслизистом слое в толстой кишке // Колопроктология. 2014. Т. 50, № 4. С. 24–28.
5. Агапов М.Ю., Халин К.Д., Барсуков А.С., Рыжков Е.Ф., Зверева Л. В. Эффективность и безопасность холодной петлевой полипэктомии при полипах толстой кишки ≤ 8 мм // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2016. Т. 128, № 4. С. 56–60.
6. Агейкина Н.В., Дуванский В.А., Князев М.В., Мальков П.Г., Данилова Н.В., Харлова О. В. Альтернативный путь развития колоректального рака. Гистогенетические и молекулярные особенности зубчатых поражений (обзор литературы, продолжение) // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2014. Т. 107, № 7. С. 4–12.
7. Завьялов Д.В., Кашин С.В., Крюкова Т.В., Мельникова Е.В., Реутова Е. В. Алгоритм первичной диагностики эпителиальных опухолей толстой кишки // Доказательная гастроэнтерология. 2017. Т. 6, № 2. С. 23–28.
8. Завьялов Д.В., Кашин С.В., Видяева Н.С. и др. Применение узкоспектральной эндоскопии при оценке колоректальных эпителиальных опухолей малых размеров // Доктор. Ру. 2018. Т. 147, № 3. С. 33–36.
9. Завьялов Д.В., Нехайкова Н.В., Завьялов Д. В. Скрининг колоректального рака: общая ситуация в мире и рекомендованные стандарты качества колоноскопии // Доказательная гастроэнтерология. 2017. Т. 6, № 4. С. 32–52.
10. Завьялов Д.В., Веселов В.В., Иванова Е.В. и др. Условия применения узкоспектральной эндоскопии для дифференциальной диагностики колоректальных неоплазий // Доказательная гастроэнтерология. 2016. Т. 5, № 2. С. 30–34.
11. Завьялов Д.В., Кашин С.В., Saito U. и др. Эндоскопическая диагностика глубины инвазии ранних форм колоректального рака // Доказательная гастроэнтерология. 2018. Т. 7, № 3. С. 60–64.
12. Кудреватых С. С. Диагностика и хирургическое лечение полиповидных новообразований толстой кишки с учетом морфологии и пролиферативной активности: автореф. дис. … канд. мед. наук. Санкт-Петербург, 2007. 22 с.
13. Старостин Р.А., Гатаулллин Б.И., Валитов Б.Р., Гатауллин И. Г. Колоректальный рак: эпидемиология и факторы риска // Поволжский онкологический вестник. 2021. Т. 12, № 4. С. 52–59.
14. American Gastroenterological Association Clinical Guidance. Approach to the use of noninvasive colorectal cancer (CRC) screening options, 2022.
15. American Gastroenterological Association Clinical Guidance. Follow-up after colonoscopy and polypectomy, 2020.
16. American Gastroenterological Association Clinical Guidance. Endoscopic removal of colorectal lesions, 2020.
17. American Gastroenterological Association Clinical Guidance. Risk stratification for colorectal cancer screening and post-polypectomy surveillance, 2023.
18. American Gastroenterological Association Clinical Guidance. Strategies to improve quality of screening and surveillance colonoscopy, 2021.
19. Kalyta A., Ruan Y., Telford J.J., De Vera M.A., Peacock S., Brown C. et al. Association of reducing the recommended colorectal cancer screening age with cancer incidence, mortality, and costs in Canada using OncoSim // JAMA Oncol. 2023. Vol. 10, N 9. P. 1432–1436.
20. Bisschops R., Hassan C., Bhandari P. et al. BASIC (BLI Adenoma Serrated International Classification) classification for colorectal polyp characterization with blue light imaging // Endoscopy. 2018. Vol. 50, N 3. P. 211–220.
21. Siegel R.L., Sandeep Wagle N., Cercek A., Smith R.A., Jemal A. Colorectal cancer statistics, 2023 // Cancer J. Clin. 2023. Vol. 73, N 3. P. 233–254. DOI: https://doi.org/10.3322/caac.21772
22. Harvey N.T., Ruszkiewicz A. Serrated neoplasia of the colorectum // World. J. Gastroenterol. 2007. Vol. 13. P. 3792–3798.
23. Huang C.S., O’Brien M.J., Yang S., Farraye F. A. Hyperplastic polyps, serrated adenomas, and the serrated polyp neoplasia pathway // Am. J. Gastroenterol. 2004. Vol. 99. P. 2242–2255.
24. Doubeni C.A., Corley D.A., Quinn v. P. et al. Effectiveness of screening colonoscopy in reducing the risk of death from right and left colon cancer: a large community-based study // Gut. 2018. Vol. 67, N 2. P. 291–298. DOI: https://doi.org/10.1136/gutjnl-2016-312712
25. Ignatovich A., East J.E., Suzuki N. et al. Optical diagnosis of small colorectal polyps at routine colonoscopy (Detect Inspect Characterize Resect and Discard: DISCARD trial): a prospective cohort study // Lancet. Oncol. 2009. Vol. 10, N 12. P. 1171–1178.
26. Kaminski M.F., Thomas-Gibson S., Bugajski M. et al. Performance measures for lower gastrointestinal endoscopy: a European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) Quality Improvement Initiative // Endoscopy. 2017. Vol. 49. P. 378–397.
27. Kanao H., Tanaka S., Oka S. et al. Narrow-band imaging magnification predicts the histology and invasion depth of colorectal tumors // Gastrointest. Endosc. 2009. Vol. 69, N 3. P. 631–636.
28. Kudo S., Hirota S., Nakajima T. Colorectal tumors and pit pattern // Clin. Pathol. 1994. Vol. 47. P. 880–885.
29. Kudo S., Kashida H., Tamura T. Colonoscopic diagnosis and management of nonpolypoid colorectal cancer // World J. Surg. 2000. Vol. 24. P. 1081–1090.
30. Kudo S., Tamura S., Nakajima T., Yamano H., Kusaka H., Watanabe H. Diagnosis of colorectal tumorous lesions by magnifying endoscopy // Gastrointest. Endosc. 1996. Vol. 44, N 1. P. 8–14.
31. Kudo S. Flat and depressed types of early colorectal cancer // Endoscopy. 1993. Vol. 25. P. 445–461.
32. Kudo S., Lambert R., Allen J.I. et al. Nonpolypoid neoplastic lesions of the colorectal mucosa // Gastrointest. Endosc. 2008. Vol. 68, N 4. P. S3-S47.
33. Kudo S., Rubio C.A., Teixeira C.R. et al. Pit pattern in colorectal neoplasia: endoscopic magnifying view // Endoscopy. 2001. Vol. 33. P. 367–373.
34. LongacreT.A., Fenoglio-Preiser C.M., 1990; Morita T. et al., 2001; Rubio C.A. et al., 2002; Buda A. et al., 2012; Rosty C. et al., 2013.
35. Rex D.K., Ahnen D.J., Baron J.A. et al. Serrated lesions of the colorectum: review and recommendations from an expert panel // Am. J. Gastroenterol. 2012. Vol. 107. P. 1315–1329.
36. Samadder N.J., Curtin K., Tuohy T.M.F. et al. Characteristics of missed or interval colorectal cancer and patient survival: a population-based study // Gastroenterology. 2014. Vol. 146. P. 950–960.
37. Sano Y., Ikematsu H., Fu K.L., Emura F., Katagiri A., Horimatsu T. etg al. Meshed capillary vessels by use of narrow-band imaging for differential diagnosis of small colorectal polyps // Gastrointest. Endosc. 2009. Vol. 69, N 2. P. 278–283.
38. Sano Y. Ikematsu H., Yoshida S., Hotimatsu T. et al. Narrow-band imaging (NBI) magnifying endoscopic classification of colorectal tumors proposed by the Japan NBI Expert Team // Dig. Endosc. 2016. Vol. 28, N 5. P. 526–533.
39. The Paris endoscopic classification of superficial neoplastic lesions: esophagus, stomach, and colon // Gastrointest. Endosc. 2003. Vol. 58, suppl. 6. P. 3–43.
40. URL: https://www.who.int/colorectal-cancer